超敏型BCA法蛋白定量试剂盒

产品及特点 本产品是在 BCA 法蛋白定量试剂盒基础上改进的超敏蛋白定量试剂盒，尤其适合对低浓度的蛋白质溶液进行定量分析。它具有下列特点。
1. 超敏感，最低检测浓度为 0.5µg/mL。
2. 线性范围在 0.5～20µg/mL，尤其适用于低浓度的样品。
3. 对大多数离子型和非离子型去污剂不敏感，但对 Cu 的还原剂和螯合剂敏感。
4. 比 Lowry 法更加简单快捷，45 分钟内完成测定。
5. 试剂稳定，但工作液 1 天内有效。
6. 终产物稳定，检测不同蛋白质分子的变异系数远小于考马斯亮蓝法蛋白定量。

7. 最短可以检测双肽，所以适合于分子量较小的蛋白质，而 Bradford 法需要一定大小的蛋白质。

规格及成分

运输及保存 常温运输和保存，但 BSA 标准品需要低温运输，-20℃保存，有效期一年。

自备试剂 样品缓冲液

使用方法

1. 用合适的方法制备待测蛋白样品，并把蛋白质溶解在合适的样品缓冲液中。 本检测方法受待测样品中螯合剂和还原剂的影响，所以需确保蛋白溶液中， EDTA 的终浓度不高于 10mM、二硫苏糖醇不高于 1mM、β-巯基乙醇不高 于 1mM，没有任何 EGTA。如果达不达上述要求，则需要稀释样品，使其 浓度降低到上述浓度之下。

2. 将本试剂盒提供的 BSA 标准品（2 mg/mL）10µL 和 490µL 自备的样品缓 冲液（用于溶解待测样品的溶液）混合，得到 500µL 浓度为 0.04µg/µL 的 BSA 工作液，放冰上待用，用于制备标准曲线，足够一次实验使用。此工作 液每次实验均需要新鲜配制。

3. 配制超敏 BCA 工作液：先计算一次检测所需 BSA 工作液的体积。如果有 N 个样品，每个样品只做一次重复，再加上 7 个标准曲线样品，则一次检测所 需 BSA 工作液的体积为： 0.15mL×（N+7）。一般多准备 10%的量。配 制时将溶液 A、溶液 B 和溶液 C 按 50：48：2 的比例混合到所需体积即可。 如果需要 9mL，则按 10mL 准备，则将 5 mL 溶液 A、4.8 mL 溶液 B、0.2mL 溶液 C 混合即可，所得溶液即超敏 BCA 工作液。

4. 取一块 96 孔板，按下表加入上步新鲜制备的 BSA 工作液、待测蛋白样品和 自备样品缓冲液：

5. 在每个孔中加入 1 倍体积（即 150 µL）的超敏 BCA 工作液并混匀。如果用 排枪加入并混匀则更好。也可把 96 孔板放在振荡器上振荡 30 秒混匀。

6. 60℃放置 1 小时。

7. 冷至室温，迅速在 562 nm 下比色测定其余样品的光吸收。如酶标仪没有 562 nm 的设定，可用接近的波长检测，如 570nm。测定操作最好在 10 分 钟内完成，否则化学反应还在继续进行，光吸收值每 10 分钟会升高 2.5%左 右。

8. 处理数据：将编号为 0 号的样品（对照）的读数从其余所有样品（包括 0 号 样品，其读数变成零）中扣除。

9. 制作标准曲线：以 0-7 号样品的 BSA 含量（单位 µg，见上表最右行）为横 坐标，以上一步得到的样品吸光值（扣除背景读数的）为纵坐标，绘出 BSA 的标准曲线。

10. 再将 N 个待测样品的吸光值（减去 0 号样品的读数后）标在标准曲线上，其 在横坐标上对应的蛋白含量（µg）就是待测样品中的蛋白质含量，除以样品 稀释液总体积（20µL），乘以样品稀释倍数即为样品实际浓度（单位： µg/µL）。

二：注意事项

11. 加工作液后也可以在室温放置 2 小时，或 60℃放置 30 分钟。超敏 BCA 法 测定蛋白浓度时，吸光度会随着时间的延长不断加深。并且显色反应会因温 度升高而加快。所以，如果蛋白质浓度较低，可以改在 60℃孵育 60 分钟。

12. 待测样品浓度在 20～2000 µg/mL 范围时有较好的线性关系。

13. 超敏 BCA 法测定蛋白浓度时，不受下列化学物质的影响

仅用于科研，不能用于临床诊断！所有产品仅供科研使用，不得用于人或动物的治疗等任何其他用途，不为任何个人提供产品和服务。