改良Lillie-Mayer苏木素染色液

产品简介：

苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色简称HE染色，是病理学和组织学很常用的一种染色方法。苏木 精为碱性天 然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的主要成分是DNA，在DNA的双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易与带正电荷的苏木 精碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。

改良Lillie-Mayer苏木素染色液无毒，无氧化膜，细胞核染色质着色深而细微，临床上常替代Harris苏木素染色液。对细胞核染色很清晰，不着染胞质和纤维成分，属进行性染色，故染色后可以不用盐酸乙醇分化，染色时间约5～8min，如果是充分氧化后可染色3～5min。常用于糖原等特染、酶组化和免疫组化等染色后复染细胞核作对照染色，尤其适用于经过特殊染色后不能经酸处理时对细胞核的复染。在特殊染色中，常与天青石蓝B液联合染色，使细胞核染色后不被后续的酸性染料所褪色。

染色原理：

细胞核染色的原理：

苏木素为碱性天 然染料，可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA，在DNA双螺旋结构中，两条核苷酸链上的磷酸基向外，使DNA双螺旋的外侧带负电荷，呈酸性，很容易与带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色，所以细胞核被染成蓝色。

细胞浆染色的原理：

伊红是一种化学合成的酸性染料，在一 定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质，为两性化合物，细胞浆的染色与染液的pH值密切相关。当染色液pH值在胞浆蛋白质等电点(4.7～5.0)以下时，胞浆蛋白质以碱式电离，则细胞浆带正电荷，就可被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子，与胞浆蛋白质带正电荷的阳离子结合，使细胞浆着色，呈现红色。

分化作用：

染色后，用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去，这个过程称为分化作用，所用的溶液称为分化液。在HE染色中常用1%盐酸乙醇作为分化液，因酸能破坏苏木素的醌型结构，使组织与色素分离而退色。大多数组织经苏木素染色后，必须用1%盐酸乙醇分化，使细胞核过多结合的苏木素染料和细胞浆吸附的苏木素染料脱去，再进行伊红染色，才能保证细胞核与细胞浆染色的分明。

返蓝作用：

 分化之后，苏木素在酸性条件下处于红色离子状态，呈红色；在碱性条件下处于蓝色离子状态，呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色，立即用水除去组织切片上的酸而中止分化，再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色，这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝，但所需时间较长。

自备材料：

1、酸性乙醇分化液

2、蓝化液，如稀氨水、碳酸 锂溶液等

3、系列乙醇

4、伊红染色液

5、4%多聚甲醛

操作步骤(仅供参考)：

(一)石蜡切片染色

1、 切片脱蜡至水

①二甲苯作用2次，每次5～10min。

②(可选)无水乙醇作用2次，每次3～5min。                       

③95%的乙醇                                  3～5min

④90%的乙醇                                  3～5min

⑤80%的乙醇                                  3～5min

⑥自来水或蒸馏水冲洗                          1～3min

2、染色

①改良Lillie-Mayer苏木素染色液染色            5～8min

②自来水或蒸馏水冲洗                          5～10s

③(可选)盐酸乙醇分化                           2～5s

④自来水冲洗                                  20～30s

⑤(可选)蓝化液返蓝                            20～40s

⑥自来水冲洗                                 30～60s

⑦伊红染色液染色                              3～5min

⑧自来水冲洗                                  1～5s

3、脱水、透明、封固

①80%乙醇                                   10～20s

②90%乙醇                                   10～20s

③95%乙醇作用2次，每次1～2min。

④无水乙醇作用2次，每次2～3min。

⑤二甲苯透明3次，每次2～3min。

⑥中性树脂封片。

染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、肌纤维、胶原纤维等呈深浅不一的红色；角蛋白、红细胞等呈明亮的橙红色。

(二)冰冻切片染色

1、乙  醚-乙醇混合固定液                       5～10s

2、自来水冲洗                                2～5s

3、改良Lillie-Mayer苏木素染色液滴染1～2min(可加热至50℃)。          

4、自来水冲洗                                2～5s

5、(可选)盐酸乙醇分化                         2～5s

6、自来水冲洗                                2～5s

7、(可选)蓝化液返蓝                           2～5s

8、自来水冲洗                                5～10s

9、伊红染色液染色                            2～5s

10、自来水冲洗                               1～2s

11、80%的乙醇                               1～2s

12 、95%的乙醇                              1～2s

13、无水乙醇                                 2～5s

14、苯酚二甲苯(1:3)                           2～5s

15、二甲苯透明3次，每次2～5s。

16、中性树脂封片

染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、纤维呈红色。

(三)细胞染色

1、4%多聚甲醛固定10～20min。

2、自来水冲洗2次，每次2min。

3、蒸馏水冲洗2次，每次2min。

4、染色、脱蜡、透明、封固步骤同石蜡切片的染色步骤，作用时间应相应缩短。

染色结果：细胞核呈蓝色；细胞质、纤维呈红色。

注意事项：

1、 切片脱蜡应尽量干净。

2、 系列乙醇应经常更换新液。

3、 盐酸乙醇分化时间应根据切片厚薄、组织类别以及新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够，以便彻底清洗酸。

4、 乙  醚-乙醇混合固定液是由乙  醚和95%乙醇等量混合而得，再加入适量乙酸，密闭保存。

5、 冷冻切片染色时间尽量要短。

6、 蓝化液常使用0.2～1%氨水或Scott促蓝液或0.1～1%碳酸 锂溶液。

7、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

有效期： 12个月有效。

仅用于科研，不能用于临床诊断！所有产品仅供科研使用，不得用于人或动物的治疗等任何其他用途，不为任何个人提供产品和服务。