柱式藻类RNA提取试剂盒（柱式藻类RNAout）

产品及特点 本产品基因开发的专门针对藻类 RNA 提取开发的高效 RNA 提取 试剂。该产品特点如下：

1. 操作更加简单快速，处理一个样品只需要约十分钟。

2. RNA 纯度更高，平均 OD260/280 一般都在 2.0 左右，能够有效去除大 多数藻类中的多糖污染。

3. 适用于常见的各种海水和淡水藻类的 RNA 提取。

4. 得到的 RNA 可直接用于 RT-PCR、Northern 杂交、cDNA 合成等实验。

5. 性价比高于进口的柱式藻类 RNA 提取产品。

规格及成分：

运输及保存 常温运输和保存，溶液 B 需要 4℃保存，有效期一年。

自备试剂 氯仿。

使用方法

1. 估算组织细胞的用量。每次微量提取一般需要 100-200 mg 藻类（湿重）。 注意海水藻类需要用纯净水洗涤 2 次以免藻类沉淀中残留的海水盐分干 扰柱式藻类 RNA 提取溶液 A 的作用。

2. 液氮研磨破碎样品：取 100-200mg 离心得到的新鲜藻类细胞沉淀放入含 液氮的研钵中，迅速将其研磨成粉末后，将粉末转移到标记的塑料离心管 中，加入 1 mL 柱式藻类 RNA 提取溶液 A，立即剧烈振荡 20 秒，充分 混匀。注意：柱式藻类 RNA 提取溶液 A 在 4℃放置后容易产生沉淀，使 用前必须放在 65℃水浴使沉淀彻底溶解并充分摇匀后再取用。

3. 将液氮研磨物转移至干净的 1.5 mL 塑料离心管中。

4. 在离心管中加入 0.3 mL 的柱式藻类 RNA 提取溶液 B 和 0.2 mL 自备氯 仿，在振荡器上振荡 30 秒混匀，此时溶液呈均匀的乳浊状（颜色将根据 提取的藻类不同而不同）。振荡器振荡时必须使管底溶液震荡起来。

5. 室温 12000-15000 g 离心 3-5 分钟，两相间将有细胞破碎物。

6. 将上清液(约 0.6 mL)转移到另一干净的 1.5 mL 塑料离心管中，下层有机 相和中间层含有 DNA、蛋白质和其他杂质，避免触及或吸取。最好留下 100 uL 上清液不取。

7. 加入等体积的柱式藻类 RNA 提取溶液 C，充分颠倒混匀。如果有沉淀产 生（对某些含糖量高的藻类，属于正常现象），千万不要去掉沉淀，一定 要把所有的混合物上柱。

8. 先将一半的溶液（如果有沉淀，则将一半的悬浊液）转移到离心吸附柱中， 13000-15000 g 室温离心半分钟，弃穿透液。

9. 将剩下的一半溶液转移到同一离心吸附柱中，13000-15000 g 室温离心 半分钟，弃穿透液。

10. 加 0.7 mL 通用洗柱液，室温离心半分钟，弃穿透液。再加 0.3 mL 通用 洗柱液，室温离心半分钟，弃穿透液。一般样品如此洗涤两次即可，但如 果在第 7 步加入柱式藻类 RNA 提取溶液 C 后有沉淀产生，则需要洗三次， 每次加入的通用洗涤液的量分别为 0.4、0.3 和 0.3 mL。

11. 室温离心半分钟。此步十分重要，否则残留的乙醇会影响 RNA 的使用。

12. 将离心吸附柱转移到 RNase-free 收集管中，加入 50-100 uL RNA 洗脱 液，室温放置 1-2 分钟。

13. 13000-15000 g 室温离心半分钟，离心管中溶液即为 RNA 样品，可以 立即使用或存放于-80℃待用。

14. RNA 完整性的电泳检测：如果需要做 Northern 杂交，强烈建议用户使 用甲醛变性胶进行 RNA 电泳，因为非变性胶不能分离所有的 RNA 分子 （BioTechniques，28：414，2000）。如果电泳发现 DNA 污染严重（跟 样品相关）建议使用含有 RNase-free DNase 处理步骤的柱式藻类 RNAout 2.0 （ ， 也 可 以 另 购 膜 结 合 DNA 清除剂。

15. RNA 产量产率测定：将 5-10 μL RNA 溶于 TE 缓冲液中(pH7.5-8.2 之 间)检测其在OD260的光吸收。通过光吸收可以得出RNA浓度（1 OD260 的 RNA=40 μg/mL），进而计算出 RNA 的产量（浓度 X 体积)和产率(RNA 产量/组织用量)。

16. RNA 纯度测定：无污染的总 RNA 的 OD260/OD280 一般在 1.8-2.1 之 间(具体数值与其碱基组成和溶液成分等多种因素有关)，高于此范围则分 别表示样品可能有蛋白质污染，但一般不影响 RT-PCR 等反应。

仅用于科研，不能用于临床诊断！所有产品仅供科研使用，不得用于人或动物的治疗等任何其他用途，不为任何个人提供产品和服务。